在微生物检测过程中，要保证检测环境及所用工具的洁净度，确保无菌性，同时要防止人为操作失误，在适宜温度下进行培养，这样才能为合理决策和指导生产提供依据。
为保证微生物检测结果的准确性，逗点生物为您提供以下几个方面的小tips：
一/培养基的灭菌和使用
☛ 每次配制时，要注意其生产日期是否在保质期内，查看其开瓶日期及瓶口密封性，保证其未变质，并且未吸潮。
☛ 培养基配制时，称量要准确，包括盐水的分装要准确。
☛ 一定要保证现配制现灭菌，未灭菌的配好培养基不能长时间放置，更不可隔夜。
☛ 灭菌时要保证恒温、恒压，同时要保证有效的灭菌时间。
☛ 灭菌过的培养基要冰箱保存，可保存一周，一般不超过3天。而且要遵循“先入先出”原则，先配制的要先使用。
☛ 在使用时，要根据当班次的使用量，用水浴锅先将培养基溶化为液态，然后及时调低水浴温度待用，千万不可长时间使培养基处于高温状态。
☛ 做产品微生物检测时，倾倒培养基温度在 48℃左右，不可过烫，避免将菌烫死；也不可过凉，使化好的培养基结块凝固。
☛ 每瓶培养基均要做空白。
☛ 尽量集中做样，避免频繁打开同一瓶培养基瓶塞，增大培养基的污染几率，出现误差结果。培养基剩余过少时，可先将其倾倒成空白用板。
二/工具的洁净度
☛ 玻璃器皿要采用干热灭菌方式进行灭菌。
☛ 检测用剪刀、勺子等物品要做到检测专用，不可与其它操作器具混用，使用时，先用75%酒精消毒，再采用灼烧方式进行灭菌。
☛ 接种环（针）采用灼烧方式灭菌，但要注意检测时要先将其进行冷却。
三/样品的采集及检测
保证采样工具的无菌性
☛ 玻璃器皿：采用干热灭菌方式进行灭菌，保证恒温、时间足够（但不可时间过长，容易导致玻璃器皿易裂纹而报废）。
☛ 取样筐：使用前要用75%酒精进行喷洒消毒。
☛ 取样勺：要保证其清洁消毒，清洁后用75%酒精进行擦拭消毒。
☛ 取样袋：可先用酒精进行擦拭消毒，再在超净台用紫外灯照射消毒，包装车间要在传递窗用紫外灯照射消毒）。
☛ 电子称表面用75%酒精消毒。
人员操作
☛ 保证手部的清洗、消毒：取样前及检测前都要先洗手再消毒。
☛ 取样要具有代表性（随机样、目的样、综合样）且要标示清楚。
☛ 取样完毕，不可在车间逗留，要及时将样品放入超净台，对其外表面进行紫外灯照射消毒。
☛ 往盐水瓶加样品时，要注意勺子或袋子尽量不接触瓶口。
☛ 样品计量要准确，稀释倍数也要准确（1mL 吸管不允许将管口敲掉），进行 100 倍稀释时，1mL 吸管要伸入盐水中，不可以将样品从管壁流下去，同时要避免将管底部捅破。
☛ 盐水温度以 40℃左右为宜，不能过热，会将部分微生物烫死；也不能温度太低，不能将样品溶解完全。
☛ 进行稀释时要摇匀，保证溶液的均一性。
☛ 倾倒平皿时，要注意培养基瓶口不要接触到平皿；倾倒的培养基要适量，不可以太少，在培养过程中易干掉，微生物亦死亡，以15mL左右为宜。
☛ 做大肠菌群样时，要提前将乳糖胆盐培养基培养管按需要量备好，放入超净台对外表面进行紫外线灭菌。
☛ 接二步时，要注意先将接种针（环）进行冷却，避免出现接不上菌落的情况，导致无法判断、确认。
☛ 检测完毕，及时放入相应培养箱进行培养，并清理清洁超净台。
四/微生物的培养
☛ 在培养过程中，要随时监控培养箱温度，保证其在适宜的温度进行培养。
☛ 要按照《微生物检验规范》要求及时观察结果，出现异常，要及时分析原因进行反馈。